在医学的进步中,T细胞扩培正成为一种引人注目的研究领域。这种技术不仅可以帮助我们更好地理解免疫系统的奥秘,还能够为治疗癌症、传染病和自身免疫性疾病等提供新的治疗途径。让我们一起踏上探索之旅,揭开T细胞扩培的神秘面纱,探索健康未来的可能性!
当我们通过各种方式获得免疫细胞后,需要在体外模拟其在体内的生长环境对其进行培养、扩增来达到我们的研究目的。而不同免疫细胞涉及到的细胞因子,激活通路不同,因此培养方法也各不相同,本文列举一些免疫细胞的培养体系仅供大家参考,在实验过程中可以根据需求和实际情况进行摸索和进一步优化,来获得我们想要的免疫细胞。
1. T细胞的活化、增殖培养与分化:
T细胞的激活涉及到两个信号通路:TCR/CD3与APC表面特异的MHC-多肽复合物结合产生的特异性抗原刺激信号;APC表面多对共刺激分子和T细胞相应受体作用后产生的非特异性的共刺激信号。
最常见的用于T细胞体外活化的是Anti-CD3和Anti-CD28,在两者的协同作用下,可使T细胞充分活化。
不同的细胞因子以诱导T细胞向不同的方向分化
1. 激活小鼠T细胞
① 从96孔组织培养板中的100-200µL培养基中的8×104个纯化T细胞开始。
② 添加2µL预洗涤和重悬的Dynabeads®磁珠,使磁珠与细胞的比例为1:1。
③ 根据具体实验要求,在37°C的加湿CO2培养箱中培养。
④ 采集活化的T细胞并直接用于进一步分析。
以上是T细胞的活化步骤,下表中整理了一些体外诱导T细胞的细胞因子可供参考。
注:原代细胞在体外培养时间不宜过长,建议在14d以内。
T细胞发育图谱
2. 细胞传代
2.1 贴壁细胞
① 用废液泵小心移去细胞培养基,加适量PBS清洗一遍细胞。
② 小心移去PBS,加入适量(1.5~2mL/10cm培养皿)0.25%胰酶,摇动培养皿使胰酶浸润所有细胞,随后放入37℃培养箱中进行消化。
③ 不同细胞消化难以程度不同,消化一两分钟后在镜下观察细胞,直至胞质回缩,细胞变圆,细胞之间不再连接成片,表明此时细胞消化适度。
④ 加入至少二倍胰酶用量的完全培养基终止消化。
⑤ 1000rpm,离心5min。加入1-2mL培养基轻轻吹散细胞,吹打混匀后形成细胞悬液。
⑥ 取20μL细胞悬液于显微镜下进行计数(本实验室可经台盼蓝染色后用细胞计数仪计数)。
⑦ 根据计数结果以合适的密度转移到新的培养瓶中培养。
2.2 悬浮细胞
① 将培养中的细胞用枪头转移至15ml或50ml离心管中;
② 1200 rpm离心3min;
③ 离心后去上清,加入1~2mL完全培养基进行重悬;
④ 轻轻吹打混匀后,取20μL细胞悬液于显微镜下进行计数(本实验室可经台盼蓝染色后用细胞计数仪计数)。
⑤ 根据计数结果以合适的密度转移到新的培养瓶中培养。
3. 细胞冻存
① 细胞按上述步骤消化离心后去上清,加入细胞冻存液重悬细胞(1个10cm培养皿的细胞冻存1支,1mL/支),将细胞轻轻吹打混匀;
② 在冻存管管壁做好标记(细胞名称、培养基、代数、冻存时间),将细胞悬液装入冻存管中,每管1mL;
③ 冻存方式有2种:
将细胞冻存管直接装入冻存盒,拧紧冻存盒盖子,放入-80℃冰箱中过夜,第二天取出冻存管,移入液氮罐中冻存,并在细胞冻存记录表对应位置做好细胞冻存记录;
将细胞冻存管依次放入4℃冰箱10min、-20℃冰箱30min、-80℃冰箱过夜、第二天放入液氮罐中冻存,并在细胞冻存记录表对应位置做好细胞冻存记录。
4. 细胞复苏
① 液氮罐中取出冻存管,直接浸入37℃温水中,摇动令其尽快融化(尽量1-2min内融化);
② 确认融化后,从37℃水浴中取出冻存管,用酒精喷洒管壁和管盖后放入超净台;
③ 在超净台中打开冻存管盖子,用1mL枪头将管内的细胞悬液加到预先装有5mL完全培养基的15mL离心管中,轻轻吹打混匀;
④ 吸出1mL培养基到冻存管中,轻轻吹打再转入15mL离心管中避免冻存管中残留细胞。
⑤ 将细胞悬液进行离心,1000rpm,5min,去上清后加入1mL完全培养基重悬,吹打混匀后计数,最后根据细胞数量选择合适面积的培养皿进行铺板;
⑥ 将细胞放入37℃,5%CO2培养箱中静置培养。
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[1]Gunnlaugsdottir, B., Anti-CD28-induced co-stimulation and TCR avidity regulates the differential effect of TGF- 1 on CD4+ and CD8+ naive human T-cells. International Immunology, 2004. 17(1): p. 35-44.
[2]Thermo Fisher Scientific Dynabeads TM Mouse T-Activator CD3/CD28 Manuals.
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