400-8766-085

高标准质量控制,高水平动物福利,高精尖技术能力

全部 心脑血管模型神经系统+精神科模型呼吸系统模型消化系统模型骨科模型免疫、代谢系统模型泌尿系统模型五官疾病模型皮下移植瘤药效模型转移瘤药效模型原位瘤模型常规脏器手术切除模型肿瘤动物模型

肾盂肾炎(PN)动物模型

肾盂肾炎(pyelonephritis,PN)是临床肾脏疾病中最常见的感染性疾病,根据病程可分为急性肾盂肾炎(acute pyelonephritis, APN)和慢性肾盂肾炎(chronic pyelonephritis, CPN)。临床上APN可使用大量抗生素而治愈,但如果治疗不当也可发展为CPN。由于抗生素对CPN疗效不佳,很难治愈,且反复发作,预后不好,所以APN转为 CPN及CPN阶段的病理损伤机制是当前急需解决的问题。因此,建立与临床CPN相似的动物模型用于实验研究具有十分重要的意义。

肾盂肾炎(pyelonephritis,PN)是临床肾脏疾病中最常见的感染性疾病,根据病程可分为急性肾盂肾炎(acute pyelonephritis, APN)和慢性肾盂肾炎(chronic pyelonephritis, CPN)。临床上APN可使用大量抗生素而治愈,但如果治疗不当也可发展为CPN。由于抗生素对CPN疗效不佳,很难治愈,且反复发作,预后不好,所以APN转为 CPN及CPN阶段的病理损伤机制是当前急需解决的问题。因此,建立与临床CPN相似的动物模型用于实验研究具有十分重要的意义。理想的CPN动物模型必须具有特征性肾盂、肾盏系统受累表现,即肾脏有局灶性粗糙的皮质瘢痕,并有相关肾乳头收缩和肾盏的扩张变钝。采用联合短暂结扎单侧输尿管和膀胱内接种细菌双因素方法,可造成结扎侧肾脏外观有粗糙皮质瘢痕、相关肾乳头收缩及肾盏扩张;镜下肾组织内可见慢性间质性肾炎病理改变及肾盂、肾盏炎症,纤维化,与公认的CPN特征性病理改变类似。同时评价肾小管损伤指标之一的尿NAG/尿肌酐比值在90d时明显升高,也证实模型动物已发生肾小管损伤,与临床CPN病理表现一致。NAG作为一种高分子质量的溶酶体水解酶,广泛存在于机体肾小管和尿道上皮细胞的溶酶体内,其中以近曲小管上皮细胞中含量最高。当肾小管发生损伤时,其可由肾小管上皮细胞释放入尿中。本模型不会出现肾功能减退及大量蛋白尿,与临床上常见的、肾功能正常的CPN相符,对 CPN发病机制及药物治疗方面的研究具有一定的应用价值。


实验方法
利用倾斜平板法制备100000000/ml及1000000/ml两种浓度大肠埃希菌(O111B4)菌液待用,使用前测集落形成单位(CFU)值核实浓度。体重200g左右雄性大鼠,术前常规禁水24h,先用细线扎住大鼠阴茎。在乙mi吸入麻醉下,动物仰卧固定于手术板上,常规消毒腹部皮肤并去毛,沿下腹部正中切开,充分暴露左侧输尿管及膀胱,在输尿管中段用10号半圆针、0号黑线向侧腹部穿针,暂不结扎。用注射器向膀胱内注射100000000/ml浓度的菌液,每只注射量约0.5ml左右,常规手术关闭腹腔。以适度松紧结扎侧腹部黑线(24h后解除),松开扎住阴茎的细线,术后恢复正常饮水与进食。分别于实验预定时间作肾功能及血生化指标测定;同时麻醉处死动物,取两侧肾脏,一半组织经固定液固定,作常规组织切片,光镜下病理检查;另一半组织匀浆后作细菌培养。处死动物前膀胱穿刺抽取尿液作细菌培养。

模型特点
模型动物术后90d时,均表现为尿N-乙酰-β-D-氨基葡萄糖苷酶(NAG)/尿肌酐明显升高;模型制作过程中,24h尿蛋白定量无明显增加。血肌酐(SCr)、尿素氮(BUN)分别于30、60、90d检测无明显升高。术后第7日时,模型动物膀胱尿标本及左肾组织细菌培养为阳性,麦康凯培养基上为不透明红色圆形菌落,血平板上则为稍凸、中等大小、边缘整齐、不透明灰白色圆形菌落;镜下为革兰氏染色阴性的粗短杆菌。细菌培养高阳性率可持续保持到术后第60日。肉眼观察第7日时模型动物左侧肾脏明显肿大,其表面可见粟粒样脓肿,部分已融合成片;肾纵切面有脓肿形成;第15日时肾纵切面可见较多脓液,肾孟明显扩张;第30日时肾脏肿胀部分减轻,外观仍见脓肿;第60日肾脏体积肿大减轻;第90日时左肾可见明显皮质瘢痕形成,表面凹凸不平,体积缩小。肉眼观察未见右。肾有化脓灶或瘢痕形成,但可见右肾代偿性增大。镜下病理学观察显示,病变急性期左肾肾盂黏膜上皮细胞坏死、脱落,腔内积脓,肾实质弥漫性化脓灶,小管腔内可见白细胞管型;7~15d时淋巴细胞浸润明显;30d可见间质纤维组织增生,肾盂处瘢痕形成;60d时部分肾小球出现纤维化;90d时可见间质纤维化,并有灶性淋巴细胞浸润。

急性肾盂肾炎动物模型

单纯感染模型
实验方法
体重为200g左右大鼠,禁止饮水24h后,事先用细线扎住大鼠阴茎。在乙mi吸入麻醉下,动物仰卧固定手术板上,常规消毒腹部皮肤并去毛,沿动物下腹部作正中剪开,充分暴露膀胱,用注射器直接向膀胱内一次性注射浓度为1000000/ml的大肠埃希菌(O111B4)菌液,每只注射量约0.5ml,手术缝合切口,关闭腹腔。1h后松开扎阴茎细线。术后恢复动物正常饮水与进食。分别于预定时间处死动物,取其两侧肾脏,小心去除肾包膜;然后纵向切开肾脏,一半匀浆后行细菌培养,另一半置于固定液中固定,作常规组织切片,HE染色,光镜下观察。同期膀胱穿刺作尿液细菌培养。

模型特点
术后3d尿液能培养出细菌,于麦康凯培养基上生长出红色圆形菌落;至7d时仍有80%的动物细菌培养阳性,15d时则仅有少数动物细菌培养阳性。肾组织细菌培养大部分动物双肾细菌培养为阳性,部分动物为一侧肾脏培养阳性。至第15日时,仍有少数肾脏细菌培养阳性。大体标本肉眼观察可见模型动物双肾体积均有不同程度增大,肾表面无明显脓肿;其纵切面可见肾盂扩张,黏膜充血,肾皮质、髓质分界不清。镜下病理学观察显示,3d时肾盂黏膜下及间质区以中性粒细胞为主伴有少量淋巴细胞的炎症细胞浸润,毛细血管扩张、充血,间质水肿。第7日时肾盂黏膜下及间质内可见淋巴细胞灶性浸润,并可见少量嗜酸性粒细胞,间质毛细血管扩张;至15d时仍可见间质淋巴细胞浸润,毛细血管增生、扩张,并有少量纤维母细胞、肉芽组织形成。

手术+感染模型
实验方法
大肠埃希菌(O111B4)菌液的制备:将菌种接种于肉汤培养基,37℃、5%CO2孵箱内孵育12h,利用倾斜平板法制备1000000/ml浓度菌液待用。体重为200g左右雄性大鼠,禁止饮水18h后经腹腔按30mg/kg体重剂量注射戊巴bi妥钠麻醉。动物仰卧固定手术板上,常规消毒腹部皮肤并去毛,铺无菌手术巾。沿下腹部作长约2cm正中切口,逐层切开腹壁进入腹腔,充分暴露左侧输尿管及膀胱;用4号缝合丝线从中段输尿管两旁分别向侧腹部穿针并引出缝合线,两针尽量保持相近,暂不结扎,用动脉夹夹闭阴茎,用 TB针向膀胱内缓慢注入0.75ml菌液。然后拉紧腹壁外面的缝合线两端,以适当松紧度“结扎”输尿管。逐层缝合腹壁切口,松开阴茎动脉夹,术后动物恢复常规饲养,自由饮水和进食。手术后20h,拆去腹壁外面输尿管结扎线,使输尿管重新开放。分别在规定的时间用动脉夹夹住大鼠阴茎后,用乙mi麻醉,仰卧于手术台上,无菌条件下开胸、开腹,抽出心血和尿液,切取左右肾脏和脾脏,作肉眼检查、细菌培养及病理组织学检查。

模型特点
术后第3日模型动物膀胱尿液即能培养出细菌,于麦康凯培养基上生长出红色圆形菌落。第7日时细菌培养阳性率分别可高达80%以上,这种高阳性率可持续保持15d以上。结扎一侧肾脏肾组织细菌培养也有细菌生长,未结扎一侧肾脏细菌培养阳性少见,且持续时间较短。心血和脾脏细菌培养均为阴性。肉眼观察模型动物左肾体积较右肾有不同程度增大,左肾表面可见数量不等的微小脓肿,个别肾脏有突出肾表面的较大脓肿;切面肾盂扩大,黏膜充血、肿胀,肾盂内有脓性分泌物,有的肾切面可见微小脓肿或锥形炎症灶。右肾外观和切面未见明显异常。镜下病理观察显示,术后3d模型动物左肾肾盂肾盏黏膜充血肿胀,有的可见黏膜表面有局灶性脓性分泌物,黏膜下可见大量中性粒细胞浸润。肾间质血管充血,多数肾脏可见脓肿,在一些肾乳头部尚可见大小不一的锥形炎症灶;肾小管不同程度扩张,以远曲小管为重;小管周围有较多中性粒细胞浸润,部分肾小管上皮细胞坏死、脱落,管腔内可见脓细胞及少量管型。肾小球无明显损伤。术后7d动物左肾间质炎症细胞减少,肾盂黏膜下、肾小管周围可见以中性粒细胞为主,伴有较多淋巴细胞和单核细胞的炎症细胞浸润;脓肿灶边缘出现较多成纤维细胞,灶内除有中性粒白细胞外,尚有大量淋巴细胞、单核细胞。肾盂黏膜充血肿胀减轻,黏膜下中性粒细胞细胞浸润明显减少,出现较多单核细胞、淋巴细胞。右肾组织无明显组织形态学改变。

需确认的信息
1. 模型种属(大鼠还是小鼠或是其他种属)
2. 动物体重有无要求,年龄有无要求
3. 雌雄有无要求
4. 模型构建具体方案
5. 取材要求(采血、取组织样本)



晶莱生物版权所有 沪ICP备16051780号-1